RIPA裂解液(強,不含抑制劑,不含螯合劑)
● 産品包裝:
産品編号
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産品名稱
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包裝
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說(shuō)明書(shū)
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RL0120F
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RIPA裂解液(強,不含抑制劑,不含螯合劑)
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100 ml
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1份
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● 産品簡介:
RIPA裂解液(RIPA Lysis
Buffer)是一種傳統的細胞組織快(kuài)速裂解液。RIPA裂解液裂解得(de)到的蛋白(bái)樣品可(kě)以用于常規的Western、IP等。RIPA的本意是Radio Immunoprecipitation Assay。RIPA裂解液的配方有很多種,根據其裂解液的強度大(dà)緻可(kě)以分(fēn)爲強、中、弱三類。該RIPA裂解液(強)的主要成分(fēn)爲50 mM Tris (pH 7.4),150 mM NaCl,1% Triton
X-100,1%
sodium deoxycholate,0.1% SDS,不含蛋白(bái)酶抑制劑,不含磷酸酶抑制劑,不含螯合劑如(rú)EDTA或EGTA,可(kě)适用于明膠酶譜實驗的蛋白(bái)提取。使用前根據實驗需要添加蛋白(bái)酶抑制劑或磷酸酶抑制劑以及EDTA或EGTA。
用該RIPA裂解液裂解得(de)到的蛋白(bái)樣品,可(kě)以用BCA蛋白(bái)濃度測定試劑盒測定蛋白(bái)濃度。由于含有較高濃度的去(qù)垢劑,不能用Bradford法測定蛋白(bái)濃度。
● 保存、效期及運輸:
-20℃保存,有效期一年(nián),濕冰運輸。
● 注意事(shì)項:
1.爲取得(de)最佳的使用效果,盡量避免過多的反複凍融。可(kě)以适當分(fēn)裝後使用。需自(zì)備PMSF。裂解樣品的所有步驟都(dōu)需在冰上或4℃進行。
2. RIPA裂解液的裂解産物中經常會出現一小團透明膠狀物,屬常見(jiàn)現象。該透明膠狀物爲含有基因組DNA等的複合物。在不檢測與基因組DNA結合特别緊密的蛋白(bái)的情況下,可(kě)以直接離(lí)心取上清用于後續實驗;如(rú)果需要檢測和基因組結合特别緊密的蛋白(bái),則可(kě)以通過超聲處理(lǐ)打碎打散該透明膠狀物,随後離(lí)心取上清用于後續實驗。如(rú)果檢測一些常見(jiàn)的轉錄因子,例如(rú)NF-kappaB、p53等時,通常不必進行超聲處理(lǐ),就(jiù)可(kě)以檢測到這些轉錄因子。
● 使用說(shuō)明:
1. 準備RIPA裂解液:
融解RIPA裂解液,混勻;取适當量的裂解液,在使用前數分(fēn)鍾内加入1/100體(tǐ)積的100 mM PMSF,使PMSF的最終濃度爲1 mM。
注:進行明膠酶譜實驗提取蛋白(bái)樣品時,不要添加EDTA或EGTA,以免螯合掉MMP活性需要的二價陽離(lí)子;蛋白(bái)酶抑制劑也要選擇性添加,不要添加金屬蛋白(bái)酶抑制劑,可(kě)以添加PMSF(絲氨酸蛋白(bái)酶抑制劑)。
2. 細胞蛋白(bái)提取:
2.1 貼壁細胞:去(qù)除培養液,加入适量1×PBS,輕柔漂洗一遍,不要擾動貼壁細胞。按照(zhào)6孔闆每孔加入100-200 μl裂解液的比例加入裂解液,移液器吹打數下,使裂解液和細胞充分(fēn)接觸,冰上裂解細胞5分(fēn)鍾,用細胞刮刀刮下細胞收集于1.5 ml離(lí)心管中,冰上繼續裂解15分(fēn)鍾,間歇混勻。
培養闆規格/培養皿表面積
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細胞量
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RIPA推薦使用量
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100 mm培養皿
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1.5×107
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0.5-1 ml
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60 mm培養皿
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5×106
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0.25-0.5 ml
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35 mm培養皿
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2×106
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0.2-0.4 ml
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6孔闆
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2.5×106
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100-200 μl
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24孔闆
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5×105
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100-150 μl
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96孔闆
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1×105
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50-100 μl
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2.2 懸浮細胞:450 g
4℃ 離(lí)心5 min收集細胞;用适量1×PBS重懸細胞,450 g 4℃ 離(lí)心5 min收集細胞;重複漂洗細胞一次;按照(zhào)細胞沉澱體(tǐ)積(PCV)20 μl加入200 μl RIPA的比例加入RIPA,混勻細胞沉澱,冰浴處理(lǐ)15分(fēn)鍾,間歇混勻。
注:2×106 Jurkat細胞,其細胞沉澱體(tǐ)積(PCM,Packed Cell Volume)大(dà)約爲20 μl。
2.3 裂解細胞:
裂解混合物超聲波處理(lǐ)(超聲條件(jiàn)根據儀器調整,建議(yì)條件(jiàn)爲);如(rú)沒有超聲破碎儀,可(kě)以使用注射器用27G針頭處理(lǐ)裂解物10-15次,以徹底裂解細胞。冰浴處理(lǐ)15分(fēn)鍾。
注:裂解中細胞會釋放(fàng)出變性的核酸,呈團狀粘稠透明樣,如(rú)不進行超聲或針頭裂解處理(lǐ),會導緻裂解物非常粘稠,大(dà)大(dà)降低蛋白(bái)提取的得(de)率和純度。
2.4 離(lí)心收集上清:
充分(fēn)裂解後,4℃ 16000
g離(lí)心10分(fēn)鍾,取上清,即可(kě)進行後續的PAGE、Western和免疫沉澱等操作(zuò)。
3. 組織樣品蛋白(bái)提取:
3.1 手術(shù)切除的組織塊迅速置于預冷(lěng)的生(shēng)理(lǐ)鹽水中,漂洗數次,洗淨組織血迹,用濾紙吸
幹組織表面液體(tǐ),将組織切成細小的碎片。
3.2 按照(zhào)每20 mg組織加入200 μl裂解液的比例加入裂解液。(如(rú)果裂解不充分(fēn)可(kě)以适當添加更多的裂解液,如(rú)果需要高濃度的蛋白(bái)樣品,可(kě)以适當減少裂解液的用量。)
3.3 用玻璃勻漿器冰浴勻漿5-10次,收集勻漿後的裂解混合物,超聲波處理(lǐ)(超聲條件(jiàn)根據儀器調整,建議(yì)條件(jiàn)爲);如(rú)沒有超聲破碎儀,可(kě)以使用注射器用27G針頭處理(lǐ)裂解物10-15次,以徹底裂解細胞。裂解物冰浴處理(lǐ)15分(fēn)鍾。
注:裂解中細胞會釋放(fàng)出變性的核酸,呈團狀粘稠透明樣,如(rú)不進行超聲或針頭裂解處理(lǐ),會導緻裂解物非常粘稠,大(dà)大(dà)降低蛋白(bái)提取的得(de)率和純度。
3.4 充分(fēn)裂解後,4℃ 16000
g離(lí)心10分(fēn)鍾,取上清,即可(kě)進行後續的PAGE、Western和免疫沉澱等操作(zuò)。