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植物原生(shēng)質體(tǐ)制備及轉化試劑盒

植物原生(shēng)質體(tǐ)制備及轉化試劑盒

産品編号:RTU4052

産品規格:40次

數量
價格 ¥600

植物原生(shēng)質體(tǐ)制備及轉化試劑盒                               

 

貨号

名稱

包裝

RTU4052

植物原生(shēng)質體(tǐ)制備及轉化試劑盒

5 ml×40

 

●  産品組成:

組分(fēn)貨号

名稱

規格

貯存

運輸

RTU4052-01

溶液I-酶溶解溶液(2×)

100 ml

-20

RT

RTU4052-02

溶液II-漂洗溶液

200 ml

-20

RT

RTU4052-03

溶液III-重懸溶液

25 ml

-20

RT

RTU4052-04

組份IV-轉化試劑

5 ml

-20

RT

RTU4052-05

溶液V-培養溶液

25 ml

-20

RT

BME

還(hái)原劑

1 ml

RT

RT

BSA-02

50mg/ml BSA溶液

5 ml

-20

RT

 

說(shuō)明書(shū)

一份

 

 

産品簡介:

植物原生(shēng)質體(tǐ)是指脫去(qù)全部細胞壁由質膜包被的具有生(shēng)命活力的裸露細胞。它具有細胞生(shēng)命特征和全能型,是細胞無性系變異和突變體(tǐ)篩選的重要來(lái)源,同時也是植物遺傳工(gōng)程的理(lǐ)想受體(tǐ)和遺傳改良的理(lǐ)想材料。酶解法分(fēn)離(lí)原生(shēng)質體(tǐ)是一個常用的技術(shù),其原理(lǐ)是植物細胞壁主要由纖維素、半纖維素和果膠質組成,因而使用纖維素酶、半纖維素酶、離(lí)析酶和果膠酶能降解細胞壁成分(fēn),去(qù)除細胞壁,即可(kě)得(de)到原生(shēng)質體(tǐ)。許多方法可(kě)誘導原生(shēng)質體(tǐ)融合,現在被廣泛采用的融合方法是聚乙二醇(PEG)法。聚乙二醇(PEG)作(zuò)爲一種高分(fēn)子化合物,合适的濃度能對原生(shēng)質體(tǐ)産生(shēng)瞬間沖擊效應,原生(shēng)質體(tǐ)很快(kuài)發生(shēng)收縮與粘連,随後用高鈣高pH法進行清洗,使原生(shēng)質體(tǐ)融合得(de)以完成。

按照(zhào)每次使用5 ml酶消化體(tǐ)系計(jì)算,本試劑盒可(kě)用于40次酶消化反應。本試劑盒每個5 ml反應體(tǐ)系可(kě)處理(lǐ)0.1 g左右的拟南(nán)芥葉片(約10~15葉片),操作(zuò)較好的情況下每5 ml體(tǐ)系可(kě)獲得(de)約50-70萬個原生(shēng)質體(tǐ)(不同植物不同操作(zuò)會有一定的差異),可(kě)滿足約25-70個樣品的原生(shēng)質體(tǐ)質粒轉染操作(zuò)(按照(zhào)每樣1-2萬個細胞計(jì)算)。

原生(shēng)質體(tǐ)轉化時,本試劑盒可(kě)以用于相(xiàng)當于6孔闆40個孔的樣品,12孔闆80個孔的樣品,或24孔闆160個孔的樣品的轉化。

貯存和效期:

-20oC保存,至少一年(nián)有效。

組分(fēn)IIIIIIV 4℃存放(fàng)3-5天不會影(yǐng)響使用效果,長期不用,按照(zhào)标簽℃貯存。

試劑盒常溫運輸。

使用說(shuō)明:

   需要準備的材料(試劑盒不提供):

   剪尖吸頭(剪尖後可(kě)以用酒精燈過火(huǒ)将吸頭處理(lǐ)平滑);纖維素酶R-10;離(lí)析酶R-10;平頭鑷子;70μm細胞過濾篩;一次性刀片;50ml離(lí)心管;1.5ml離(lí)心管;水浴鍋。

一、原生(shēng)質體(tǐ)分(fēn)離(lí):

即用型酶溶液配制

 

5 ml配制量

10 ml 配制量

溶液I

2.5 ml

5 ml

纖維素酶R-10

0.075

0.15

離(lí)析酶R-10

0.02

0.04

 

混勻後 55℃水浴 10 min,期間颠倒混勻 2-3次,冷(lěng)卻至常溫後加入以下成分(fēn)。

注:55oC孵育可(kě)以有效滅活DNaseProtease,并促進酶溶解

還(hái)原劑

2.5 μl

5 μl

50mg/ml BSA

0.1 ml

0.2 ml

滅菌水

定容至5 ml

定容至10 ml

注:即用型酶溶液現用現配,不建議(yì)配制後凍存後再使用;

溶解好的正常酶溶液應爲澄清棕黃(huáng)色溶液,如(rú)使用純度不好的酶,溶液爲不溶解的乳白(bái)色懸濁液,不能使用。

1. 酶解:

取生(shēng)長狀态良好的葉片切成0.5-1 mm的小條,按照(zhào)0.1 克葉片(拟南(nán)芥約15-20個葉片)加5 ml即用型酶溶液的比例迅速将切割好的葉片小條浸泡于酶溶液中,避光(guāng),無需震蕩,常溫(20-25℃)酶解3小時,間歇混勻。

注:酶解時間與葉片種類,葉片生(shēng)長狀态有關,請(qǐng)根據實驗需要适當調整酶解時間。3小時爲拟南(nán)芥葉片推薦的酶解時間。如(rú)條件(jiàn)允許,可(kě)以使用微型真空泵常溫避光(guāng)條件(jiàn)下抽真空30 min,以使酶溶液更好地進入細胞間隙。酶溶液變爲綠色表明有原生(shēng)質體(tǐ)已經有分(fēn)離(lí),溶液爲濃綠色表明原生(shēng)質體(tǐ)已經大(dà)量分(fēn)離(lí)。拟南(nán)芥原生(shēng)質體(tǐ)大(dà)小約爲30-50 μm,顯微鏡鏡檢後确定是否分(fēn)離(lí)。葉片原生(shēng)質體(tǐ)細胞顯微鏡下爲綠色圓球狀,葉綠體(tǐ)分(fēn)散在整個細胞内,說(shuō)明狀态較好;如(rú)呈現不規則形狀,說(shuō)明原生(shēng)質體(tǐ)破碎或即将破碎。


 

2. 漂洗:

酶解後加入等體(tǐ)積的溶液II,如(rú)使用5 ml酶解體(tǐ)系,加入5 ml溶液II,輕柔混勻。

3. 過濾:

用孔徑70 μm篩網過濾步驟2中的溶液,去(qù)除未消化的葉片,收集濾出液于50 ml離(lí)心管中。

4. 第一次收集:

濾出液100g常溫離(lí)心 2分(fēn)鍾,盡量去(qù)除上清。

注:爲了避免原生(shēng)質體(tǐ)離(lí)心時貼在管壁,建議(yì)整個實驗過程使用水平轉頭;離(lí)心時,可(kě)調低離(lí)心機(jī)的升速和降速。升速過快(kuài),原生(shēng)質體(tǐ)可(kě)能離(lí)到管壁上;降速過快(kuài),可(kě)能導緻管底原生(shēng)質體(tǐ)懸起。

5. 第二次收集:

加入2-5 ml 溶液II,用剪尖的藍吸頭重懸原生(shēng)質體(tǐ),冰浴30分(fēn)鍾,原生(shēng)質體(tǐ)在重力作(zuò)用下可(kě)以沉降到離(lí)心管底部,盡量吸除上清,收集原生(shēng)質體(tǐ)。(如(rú)果發現原生(shēng)質體(tǐ)沉降的速度比較慢(màn)或者得(de)率比較低,也可(kě)以考慮常溫100 g離(lí)心1-2 min收集原生(shēng)質體(tǐ))。

6. 重懸:

小心去(qù)除上清溶液,不要觸動原生(shēng)質體(tǐ)沉澱,沉澱用剪尖的藍吸頭重懸于1 ml溶液III中即爲原生(shēng)質體(tǐ)溶液。(可(kě)以用血球計(jì)數闆計(jì)數,根據原生(shēng)質體(tǐ)數量調整溶液III的加入體(tǐ)積,使得(de)原生(shēng)質體(tǐ)密度爲2×105/ml或更高)。

注:制備好的原生(shēng)質體(tǐ)可(kě)以在4oC或冰浴保存至少24 h。

二、原生(shēng)質體(tǐ)轉化和培養:

  1. 轉化溶液配制:

植物原生(shēng)質體(tǐ)轉化參考下表根據樣品量配制轉化溶液。

轉化溶液現用現配。轉化溶液需要在轉化前至少1小時配制,以确保轉化試劑溶解充分(fēn)。轉化溶液配制後盡量當天使用。配制好的轉化溶液4℃保存3-5天之内仍然有較好的轉化效率,但(dàn)和當天配制的轉化溶液相(xiàng)比,轉化效果可(kě)能會有一定程度的下降。

 

120 μl

1個樣品)

1.2 ml

10個樣品)

5 ml

(40個樣品)

轉化試劑粉末

48 mg

480 mg

2 g

轉化試劑溶解液(

60 μl

0.6 ml

2.5 ml

滅菌水

定容至120 μl

定容至1.2 ml

定容至5 ml

2. 準備質粒:

取10 μl質粒DNA(10-20 μg,濃度爲1-2 μg/μl)于1.5 ml 離(lí)心管中。

注:質粒大(dà)小建議(yì)爲5-10 kb,質粒濃度爲1-2 μg/μl左右;

原生(shēng)質體(tǐ)轉化對于質粒的純度要求較高,盡量使用高純度的質粒。

3. 質粒轉化:

3.1 質粒管中加入100 μl原生(shēng)質體(tǐ)溶液(原生(shēng)質體(tǐ)密度爲2×105/ml,約2萬個原生(shēng)質體(tǐ)),輕柔混勻。

3.2 加入等體(tǐ)積即110 μl 步驟1事(shì)先準備好的轉化溶液,輕彈管底,輕柔混勻,常溫25℃放(fàng)置5-15分(fēn)鍾。

注:最長可(kě)以孵育15 min,但(dàn)通常孵育5min時間已經足夠。最佳的孵育時間對于不同的原生(shēng)質體(tǐ)和不同的質粒需要通過實驗摸索。

4. 終止轉化:

加入2倍體(tǐ)積即440 μl 溶液II,輕柔徹底混勻,終止轉化過程。

5. 收集原生(shēng)質體(tǐ):

常溫100g離(lí)心1-2分(fēn)鍾,盡量去(qù)除上清。

注:由于轉化後的溶液會非常粘稠,加入溶液II後離(lí)心1 min通常可(kě)以使原生(shēng)質體(tǐ)聚集在管底,但(dàn)使用某些突變體(tǐ)時爲減少原生(shēng)質體(tǐ)損失,可(kě)将離(lí)心時間延長到2 min。

6. 原生(shēng)質體(tǐ)漂洗:

  加入500 μl溶液II輕輕重懸原生(shēng)質體(tǐ),常溫100g離(lí)心1 min,盡量去(qù)除殘留的上清。注:本步驟可(kě)以充分(fēn)去(qù)除殘留的轉染試劑溶液中的組分(fēn),避免轉染試劑溶液中的組分(fēn)對于後續的不良影(yǐng)響。

7. 原生(shēng)質體(tǐ)重懸:

沉澱中加入1 ml溶液V,輕柔重懸。

8. 原生(shēng)質體(tǐ)培養:

将離(lí)心管水平放(fàng)置,23-25oC弱光(guāng)培養。

注:根據實驗需求确定孵育時間。RNA分(fēn)析孵育2-6小時;酶活性分(fēn)析和蛋白(bái)标記實驗孵育2-16小時;基因編輯的效果在轉染24小時後可(kě)能被檢測到。

三、實驗示例:

  

 

 使用原生(shēng)質體(tǐ)植物原生(shēng)質體(tǐ)制備及轉化試劑盒轉染拟南(nán)芥原生(shēng)質體(tǐ)的效果圖。

實驗步驟:稱取0.48 g轉化試劑于2 ml 離(lí)心管中,加入轉化試劑溶解液後,颠倒混勻,蒸餾水定容至2 ml,使轉化試劑充分(fēn)溶解後備用。在2 ml的圓底離(lí)心管中加入10 μl(20 μg)EGFP質粒 (植物用綠色熒光(guāng)蛋白(bái)),加入100 μl制備好的原生(shēng)質體(tǐ),輕柔混勻後加入110 μl當日(rì)配制好的轉化試劑溶液,輕柔混勻,常溫靜(jìng)置5 min後加入440 μl溶液II終止轉化,輕輕颠倒混勻,常溫100 g離(lí)心1 min,去(qù)除上清,再加入0.5 ml溶液II,輕柔重懸原生(shēng)質體(tǐ),常溫100 g離(lí)心1 min後,盡量去(qù)除上清,收集原生(shēng)質體(tǐ)。加入1 ml溶液V,小心重懸原生(shēng)質體(tǐ)後水平放(fàng)置25℃培養過夜(約16h),次日(rì)于熒光(guāng)顯微鏡下檢測EGFP熒光(guāng)信号。


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InstitutionCollege of Horticulture, Nanjing Agricultural University

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